生物化学习题及实验技术（李登文）（第三版）

《生物化学习题及实验技术》（第三版）为修订教材。上上篇是生物化学习题，将对应《现代生物化学》教材，增设“碳水化合物和糖生物学”一章。习题包括名字解释、填空、是非、选择、简答等多种形式，习题内容丰富，难易适中，并附有答案。旨在帮助学生检验学习成效，提高综合分析问题、解决问题的能力。下篇是实验技术，内容涵盖离心、层析、电泳和光谱分析等生物化学基本技术，使学生在掌握糖、脂、蛋白（酶）、核酸、维生素等生命分子的分离纯化及检测技术的同时，学习生物化学基本实验技术的综合运用。

李登文，南开大学教授。于1993年进入南开大学微生物系学习。 1997年本科毕业，同年免试继续攻读硕士研究生，研究的主要内容是“酵母金属硫蛋白的研究”，于2000年获得硕士学位。2002年进入南开大学生物化学与分子生物学系，开始博士研究生阶段的学习，研究方向是“组蛋白 H3 磷酸化与细胞有丝分裂的关系研究”，2005年获得博士学位，并留校工作。参与“生物化学”、“普通生物学”等课程的教学工作；科研工作主要集中在细胞形态结构与功能方面的研究，以第 一作者在国际和国内核心刊物发表多篇论文。

上篇　生物化学习题 第一章　绪论 1 第二章　蛋白质化学 6 第三章　酶化学 31 第四章　核苷酸和核酸 56 第五章　维生素与辅酶 81 第六章　生物膜 93 第七章　激素与细胞信号转导 101 第八章　新陈代谢引论 114 第九章　糖代谢 115 第十章　生物氧化 132 第十一章　光合作用 143 第十二章　脂代谢 154 第十三章　氨基酸的代谢 165 第十四章　核苷酸代谢 176 第十五章　DNA的复制、修复和重组 190 第十六章　RNA代谢 209 第十七章　蛋白质的生物合成与修饰 227 第十八章　基因表达的调节 247 第十九章　重组DNA技术与基因组学 267 下篇　生物化学实验技术 第一章　生物分子的制备及分析 279 实验1　蒽酮比色法测定组织中的蔗糖含量 279 实验2　血糖的定量测定 280 实验3　大豆多糖的提取及测定 281 实验4　血清脂类的快速测定 283 实验5　胆固醇的提取及鉴定 285 实验6　维生素C的提取及含量测定 287 实验7　维生素A的提取及含量测定 290 实验8　蛋白质的沉淀作用 291 实验9　氨基酸和蛋白质的颜色反应 293 实验10　蛋白质的两性性质和酪蛋白等电点的测定 295 实验11　胰蛋白酶和胰蛋白酶抑制剂的制备及活力测定 297 实验12　多酚氧化酶的制备和性质研究 298 实验13　碱性蛋白酶活力测定 301 实验14　胰蛋白酶米氏常数（Km）的测定——甲醛滴定法 304 实验15　BCA法测定蛋白质的浓度 305 实验16　考马斯亮蓝染色法测定蛋白质浓度 306 实验17　鼠多克隆抗体制备 308 实验18　免疫印迹（Western blotting） 309 实验19　酶联免疫吸附测定 312 实验20　DNA的制备、鉴定及含量测定 315 实验21　酵母RNA的制备、鉴定及含量测定 318 实验22　反转录PCR 320 实验23　碱性SDS法快速提取大肠杆菌质粒DNA 322 实验24　紫外分光光度法测定DNA浓度及纯度 324 第二章　色谱分析法 326 实验25　蛋白质的水解和纸色谱法分离氨基酸 326 实验26　离子交换色谱法分离氨基酸 329 实验27　聚酰胺薄膜色谱法测定肽的N末端氨基酸 331 实验28　凝胶过滤色谱法测定蛋白质的分子量 335 实验29　鸡卵黏蛋白的制备及其对胰蛋白酶的抑制作用 341 实验30　糖原磷酸化酶b的分离纯化及检测 346 实验31　亲和色谱法纯化胰蛋白酶 349 实验32　亲和色谱法分离纯化绿色荧光蛋白 354 第三章　区带电泳 357 实验33　醋酸纤维素膜电泳法分离血清蛋白质 357 实验34　乳酸脱氢酶同工酶的聚丙烯酰胺凝胶电泳 360 实验35　SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳法测定蛋白质的分子量 366 实验36　聚丙烯酰胺凝胶等电聚焦电泳测定蛋白质的等电点 369 实验37　琼脂糖凝胶电泳法分离鉴定质粒DNA的限制性内切酶酶切片段 372 第四章　物质代谢 375 实验38　肾上腺素的提取和鉴定 375 实验39　胰岛素对血糖水平的影响 376 实验40　发酵过程中的中间产物的鉴定 378 实验41　转氨基作用 379 实验42　饮食和激素对兔肝糖原含量的影响 381 实验43　小鼠肺组织石蜡包埋切片的制备及SPC基因表达的原位杂交检测 383 参考文献 388